Некоторые пациенты интересуются: забор биоматериала – что это за процедура и в каких случаях она необходима. Если отвечать коротко, то это анализ крови, урины, соскобов со слизистой для диагностики заболеваний. Сбор некоторых материалов пациент может проводить самостоятельно, а для других требуется проведение медицинских манипуляций.
Доставка в лабораторию материала для исследования осуществляется в контейнерах, биксах или в сумках-холодильниках. Доставляемые емкости с жидкими материалами должны быть закрыты пробками, исключающими выливание содержимого во время транспортирования. Дно контейнеров, содержащих емкости с ПБА, должно быть покрыто адсорбирующим материалом (марлевая салфетка, ткань, вата и пр.), контейнеры, боксы или сумки-холодильники должны быть промаркированы и иметь международный знак «Биологическая опасность». Не допускается доставка материала в хозяйственных сумках, чемоданах, портфелях и других предметах личного пользования.
После взятия любого биологического материала у пациента с целью проведения точной диагностики, следует как можно быстрее доставить его в лабораторию. Доставка осуществляется в соответствии с установленными правилами, что обеспечивает точность результатов будущего исследования. Ввиду существования многообразия инфекционных заболеваний, очень важна безопасная транспортировка биологического материала в лабораторию, то есть медицинский работник, ответственный за доставку анализов, прежде всего, должен обеспечить личную защиту от инфицирования. В клиническую или бактериологическую лабораторию направляются пробы следующих биологических материалов:
Каждый вид биологического материала требует определенной техники транспортировки в лабораторию и соответствующей оснащенности лечебного учреждения, где проводится забор. Европейская лабораторная компания в Санкт-Петербурге более 15 лет занимается профессиональным обеспечением лабораторий всех видов, что подразумевает поставку высококачественного оборудования, приборов, реагентов, сред для микробиологических исследований, специальных контейнеров и тест систем.
1. Материал доставляется в лабораторию с учетом правил транспортировки для различных видов исследований. При направлении материала на исследование, прежде всего, необходимо исключить вероятность контаминации собранного биологического материала.
2. Транспортировка биоматериала должна осуществляться в максимально короткие сроки: как правило, не более 1,5 — 2 часов.
3. Транспортировка биоматериала осуществляется в специальных закрытых переносках (укладках), желательно — термостатированных, выдерживающих дезинфекцию.
4. Контейнеры для транспортировки материала должны обеспечивать герметичность, стерильность, целостность образцов.
5. Сопроводительная документация помещается в предназначенный для нее карман переноски (укладки), а в случае его отсутствия — кладется в переноску в отдельном полиэтиленовом пакете.
6. В сопроводительном документе-направлении необходимо указать: цель исследования, фамилию, имя, отчество, возраст пациента, предполагаемый диагноз или показания к обследованию, дату взятия пробы, какое учреждение направляет материал. При необходимости указывается и дополнительная информация – физиологическое состояние пациента, курение, прием алкоголя и т.д.
7. Все образцы должны иметь четкую маркировку, обеспечивающую их безошибочную идентификацию. К каждому образцу прикладывается направление.
8. В случае несоблюдения правил взятия и условий доставки биологического материала образцы не подлежат лабораторному исследованию и об этом сообщается врачу, направившему биологический материал на исследование.
Основные требования к процессу доставки биологического материала
Алгоритм транспортировки биологического материала в лабораторию предполагает следующие поочередные действия ответственного медработника:
Строгое соблюдение установленных правил относительно забора, хранения и транспортировки биологического материала на исследование, позволяет обеспечить максимальную точность результатов, а также безопасность для здоровья медработников.
РОЛЬ МЕДИЦИНСКОЙ СЕСТРЫ В ПОДГОТОВКЕ ПАЦИЕНТА К ЛАБОРАТОРНОМУ ИССЛЕДОВАНИЮ. Г ЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ
«70% информации о пациенте дают лабораторные анализы»
проф. Эммануэль, 2000 г.
Понятие и значение лабораторной диагностики
Лабораторная диагностика – совокупность физико-химических, биохимических и биологических методов диагностики, исследующих отклонения в составе и изменения свойств тканей и биологических жидкостей больного, а также выявляющих возбудителей болезней.
Лабораторные анализы выполняются практически у всех пациентов, т.е. значительно чаще, чем другие дополнительные методы обследования пациента.
В клинической медицине методы лабораторной диагностики применяют: для подтверждения клинического диагноза или его уточнения, установления причины болезни (при генетических, инфекционных заболеваниях, отравлениях), для характеристики формы, тяжести течения и определения прогноза болезни, для выбора этиологической и патогенетической терапии, контроля за результатами лечения, для обнаружения патологии при скрининговых исследованиях в диспансеризируемых контингентах населения.
Биологические материалы для лабораторных исследований
Материалом для лабораторных исследований могут служить различные биологические жидкости: кровь, моча, кал, желудочный сок, желчь, слюна, ликвор, сперма, выпотные жидкости (экссудаты, транссудаты), конденсат выдыхаемой влаги, а также ткань паренхиматозных органов, получаемая способом биопсии.
Биологический материал исследуется в медицинских лабораториях, основным видом которых является клинико-диагностическая лаборатория (КДЛ). В многопрофильных больницах и поликлиниках КДЛ производят общеклинические, гематологические, биохимические, иммунологические, цитологические, серологические, микробиологические и другие виды исследований.
Виды лабораторных исследований
Определение физико-химических свойств биологических субстратов (например, общий анализ крови, мочи, мокроты; биохимическое исследование крови:холестерин, общий белок,билирубин; кал на скрытую кровь, яйца гельминтов,простейшие).
Для транспортировки биоматериалов в лабораторию используют специальные контейнеры (одноразового пользования) или чистую, сухую стеклянную посуду.
Выявление микробного состава и идентификация микрофлоры (например, моча на стерильность, кал на кишечную группу, мазок из зева при подозрении на дифтерию).
Сестра получает для забора материала стерильную посуду, подготовленную в бактериологической лаборатории.
Проведение исследований по маркерам к некоторым инфекционным агентам, а также по естественным (нормальным) антителам к широко распространенным бактериям и вирусам (кровь на ВИЧ, гепатиты В и С, RW-инфекцию).
Роль медсестры в подготовке пациента к лабораторному исследованию
Точность врачебного диагноза напрямую зависит от достоверности результатов проведённых дополнительных исследований.
Значимым моментом лабораторного процесса является подготовка пациента к проведению обследования. Существует целый комплекс требований, которые необходимо учитывать при направлении биоматериала на лабораторные анализы.
Обязанность подготовить пациента к исследованию возложена на медицинскую сестру. Медицинская сестра должна быть готова ответить на любой вопрос пациента о предстоящем исследовании.
Психологическая подготовка пациента заключается в максимально полном информировании пациента о целях проведения исследования, о правилах подготовки к исследованию, о возможных неприятных ощущениях.
Медицинская сестра должна учитывать способность пациента к восприятию информации. Если у пациента нарушена память, снижен интеллект, необходимо контролировать сбор материала или инструктировать близких пациента, представлять информацию в письменном виде, напоминать пациенту о необходимых действиях.
Медицинская сестра должна знать не только цель исследования и правила подготовки к исследованию. Знание нормальных показателей необходимо медицинской сестре для осуществления мониторинга динамики патологического процесса, для своевременной диагностики отклонений от нормы.
Алгоритм подготовки пациента к лабораторным исследованиям
1. Определение времени проведения инструктажа.
2. Подготовка лабораторной посуды.
3. Оформление направления.
4. Информирование пациента о назначенном исследовании, его цели, о времени, месте проведения, правилах подготовки и взятия биоматериала, возможных неприятных ощущениях.
5. Контроль усвоения информации.
Для контроля усвоения информации можно попросить пациента повторить информацию. Не рекомендуется задавать закрытые вопросы, на которые можно ответить «да» или «нет». Например, если спросить «Вам понятно, как собрать мочу на исследование?», пациент ответит «Да» или «Нет». Однако медицинская сестра не будет точно знать, запомнил ли пациент правила сбора мочи. Лучше задавать уточняющие вопросы открытого типа. Например, «Как провести туалет наружных половых органов?», «Сколько мочи нужно собрать в контейнер?», «В какое время нужно сдать мочу на пост?» и т.д.
Лабораторная посуда, транспортировка биоматериала
Стеклянная посуда, до настоящего времени широко используемая для сбора биоматериала, не может гарантировать герметичного и надежного хранения материала, а также удобства работы с пробами.
Для сбора мочи, кала, мокротыпредпочтительнее использовать контейнеры.
Контейнеры имеют градуировку от 30 до 100 мл. Крышки с резьбой обеспечивают герметичность контейнеров, что соответствует требованиям, предъявляемым к транспортировке и хранению биоматериалов. Контейнеры для кала снабжены шпателем.
Преимущество использования контейнеров:
— отпала проблема поиска и обработки неспециализированной тары;
— биоматериал удобно транспортировать из отделений в лабораторию (исключается расплескивание и испарение);
— в исследуемом биоматериале снизилось количество посторонних примесей.
Особые требования предъявляются к лабораторной посуде для бактериологического исследования.
Бактериология – прямой метод выращивания возбудителей на питательных средах с последующим подсчетом числа выросших колоний, определением вида возбудителя и его чувствительности к антибактериальным препаратам.
Отбор проб для бактериологического исследования осуществляется в стерильную лабораторную посуду.
Пробы крови собирают в вакуумные пробирки. Пробирка может содержать наполнители (реактивы и другие добавки). Цвет крышки зависит от вида исследования и состава реагентов в пробирке.
Транспортируют биоматериал в закрытых контейнерах, термосумках, подвергающихся дезинфекционной обработке. При транспортировке сопроводительную документацию помещают в упаковку, исключающую возможность её загрязнения биоматериалом. Бланки направлений помещать в пробирку с кровью запрещается.
А Б В
Рис. Транспортные контейнеры (А – термосумка, Б – контейнер для транспортировки крови, В – контейнер для транспортировки мочи)
Важные условия хранения и времени доставки материала
Хранение и транспортировка биологического материала предусматривают тщательное выполнение следующих правил:
Выполнение всех условий транспортировки биологических проб повышает процент точности результатов аналитических мероприятий.
Как правильно собирать, хранить и транспортировать
Берутся разные типы биологического материала, и правила забора могут различаться. Для одних анализов требуется специальная подготовка, а сбор материала проводится натощак, другие биоматериалы можно забирать в любое время дня. Перед назначением исследования врач подробно объясняет пациенту правила сбора и подготовки к анализу:
Хранить биологические материалы для лабораторных исследований нужно так, чтобы не повредить взятые образцы. Когда сделан забор биоматериала на исследование микрофлоры, необходимо в течение 2 часов доставить его в лабораторию. Если отправка материала по каким-то причинам невозможна, то его помещают в термостат. Правила хранения биоматериала указаны в инструкции, выдаваемой баклабараторией.
Кровь и урина могут храниться несколько часов при комнатной температуре. Исключение – сбор урины на бакпосев. Здесь необходима быстрая доставка.
Забор биоматериала на предметное стекло позволяет сохранять образцы для исследования до нескольких дней. При этом необходимо соблюдать правила хранения, чтобы не допустить случайного повреждения материала.
Транспортировка биоматериала проводится в специальных герметичных контейнерах. При этом нужно соблюдать следующие правила:
Одноразовые расходные материалы облегчают забор биоматериала для анализа на гинекологические и урологические патологии, при лор-заболеваниях. На сайте «Алайф-Дафина» представлены гинекологические зеркала, зонды и цитощетки для забора материала на исследование из уретры и влагалища. Зонды также помогут соблюдать правила сбора мазка из носоглотки. Компания работает по всей России, доставляя товары в любую точку страны.
Инструкция по сбору, хранению и транспортировке
биологического
материала для лабораторных исследований
Правила
взятия, хранения и транспортировки
биоматериала
для
выявления возбудителей заболеваний
методом ПЦР
Что можно исследовать
Забор биоматериала для исследования проводят из разных мест:
Для исследования также берут кал и урину. Моча даст информацию об обмене веществ и характере работы почек, позволит выявить скрытые воспалительные процессы. Анализ кала назначают на скрытую кровь, для выявления кишечных паразитов, на дисбактериоз.
Правила обработки рук медицинского персонала и кожных покровов пациентов.
В зависимости от выполняемой медицинской манипуляции и требуемого уровня снижения микробной контаминации кожи рук медицинский персонал осуществляет гигиеническую обработку рук или обработку рук хирургов.
Гигиеническая обработка рук проводится двумя способами:
— гигиеническое мытье рук мылом и водой;
— обработка рук кожным антисептиком.
Обработку рук хирургов проводится в два этапа:
— I этап — мытье рук мылом и водой в течение двух минут, а затем высушивание стерильным полотенцем (салфеткой);
— II этап — обработка антисептиком кистей рук, запястий и предплечий.
Для достижения эффективного мытья и обеззараживания рук необходимо соблюдать следующие условия:
— коротко подстриженные ногти,
— отсутствие лака на ногтях,
— отсутствие искусственных ногтей,
— отсутствие на руках колец, перстней и других ювелирных украшений. Перед обработкой рук хирургов необходимо снять также часы, браслеты и пр.
Для высушивания рук применяют чистые тканевые полотенца или бумажные салфетки однократного использования, при обработке рук хирургов — только стерильные тканевые.
Техника забора и транспортировки биологического материала для проведения микробиологического исследования
Рвотные
массы и промывные воды желудка
(50—100 мл) отбирают в стерильные баночки,
добавляя в них стерильный 10% раствор
соды до нейтральной реакции пробы
(контроль pH осуществляют полосками
индикаторной бумаги).
Желчь
(дуоденальное содержимое) берут с помощью
стерильного дуоденального зонда, который
вводят натощак в двенадцатиперстную
кишку. При правильном введении выделяется
желчь золотисто-желтого цвета (порция
А). Затем в зонд вводят 30 мл 30% стерильного
раствора магния сульфата, подогретого
до температуры 37Q
С, и через 15-20 мин извлекают пузырную
желчь темного цвета (порция В). В
последующем желчь будет выделяться из
желчных протоков (порция С). Каждую
порцию желчи собирают в отдельную
пробирку. Нативный материал без
промедления отправляют в лабораторию.
Кровь
дня выделения сальмонелл берут шприцем
из локтевой вены в первую неделю
заболевания в количестве 10 мл (в более
поздние сроки — 15-20 мл) и засевают у
постели больного в соотношении Г. 10 в
среду Раппопорта или желчный бульон.
При отсутствии возможности посева
кровь отбирают в стерильную пробирку,
закрывают пробкой и направляют в
лабораторию. Для серологических
исследований кровь берут из локтевой
вены дважды по 5—10 мл в первые дни болезни
и через 7—10 сут.
В
случае смерти больного с диарейным
кишечным заболеванием органы трупа
должны подвергаться бактериологическому
исследованию в ближайшее время.
Исследованию подлежат:
«
содержимое тонкой и толстой кишки;
Взятые
пробы различных органов трупа укладывают
отдельно в стерильные банки.
Пробы
для бактериологического исследования
отбирают в стерильную посуду без
следов дезинфицирующих растворов.
Стерилизацию посуды проводят
автоклавированием, сухим жаром или
кипячением в 1% растворе соды.
Допускается дезинфекция суден и тарелок
осветленным раствором хлорной извести
(нельзя использовать лизол и карболовую
кислоту) с последующим промыванием
горячей водой до полного удаления
дезинфектанта. Банки, пробирки с
материалом должны закрываться
непромокаемыми пробками и пергаментной
бу
магой,
укладываться в специально подготовленную
для транспортирования металлическую
тару. Все материалы должны направляться
в лабораторию с сопровождающим не
позднее чем через 2 ч после их отбора
(при использовании транспортных сред
и сред обогащения — в течение 1—7 суток
в зависимости от среды).
Правила
забора материала для бактериологического
исследования
Материалы
для бактериологического исследования
забирает от больных медицинский
персонал лечебного учреждения.
При
исследовании на бактерионосительство
сбор материала проводит специально
проинструктированный медицинский
работник под руководством врача.
Ответственность за организацию отбора
проб и их доставку в лабораторию
возлагается на начальника лечебного
учреждения.
Основным
материалом для исследования являются
испражнения. При заболеваниях, протекающих
по типу острого гастроэнтерита,
дополнительно исследуют рвотные
массы и промывные воды желудка. Кровь
используют для выделения сальмонелл и
серологических исследований. Желчь
(дуоденальное содержимое) исследуют
улиц, переболевших сальмонеллезом
или холерой, при диспансерном наблюдении.
Испражнения
отбирают после дефекации больного из
судна, горшка, эмалированных или
картонных тарелок (стерильных, без
следов дезинфектанта) стерильным
шпателем, ложкой или петлей из алюминиевой
проволоки. Отбирают 2—3 г испражнений,
обязательно включая патологические
примеси (слизь, кровь, гной). Собранные
порции испражнений помещают в стерильные
баночки (пробирки) и сохраняют на
холоде, если срок доставки в лабораторию
не превышает 2 ч. В противном случае
используют транспортные среды —
консерванты (глицериновая смесь,
тиогликолевая среда) или среды обогащения
(на сальмонеллы — селенитовый бульон,
среда Мюллера, магниевая). Объем
испражнений при этом должен составлять
1/3 объема консерванта (среды обогащения).
У больных с тяжелой формой гастроэнтерита
(подозрение на холеру) испражнения
обязательно направляют в лабораторию
в нативном виде и в 1% щелочной пептонной
воде.
Испражнения
можно забирать путем введения в прямую
кишку на 6-~ 10 см стерильной петли из
алюминиевой проволоки или стерильного
ватного тампона. Конец тампона (петли)
непосредственно перед употреблением
смачивают стерильным 0,9% раствором
натрия хлорида или консерванта. Сразу
же проводят посев на питательные среды
или помещают тампон в пробирку (флакон)
с консервантом или средой обогащения
(на сальмонеллы — в селенитовую среду).
Для
целенаправленного исследования на
возбудителей кампило- бактериоза
испражнения берут из судна стерильной
деревянной палочкой немедленно после
дефекации или из прямой кишки тампоном.
При
условии незамедлительной доставки
материала в лабораторию образцы
фекалий, отобранные шпателем в количестве
0,8—1,0 г в стерильные стеклянные флаконы,
транспортируются в нативном состоянии;
допускается хранение нативных фекалий
при 4° С не более 1 ч. При необходимости
транспортировки материала в течение
времени, превышающего 1 ч с момента
его забора, следует применять пробирочные
транспортные среды: 0,9% раствор натрия
хлорида (срок хранения фекалий при
комнатной температуре 3—5 ч), 0,1% пептонную
воду (3—48 ч), тиогликолевую среду для
контроля стерильности КС (до 3 сут). В
любую из этих транспортных сред, разлитую
в пробирки по 3—5 мл, исследуемый
материал помещают в соотношении 1:3-1:5
(об:об). Охлаждение до 4* С позволяет
значительно удлиннить сроки транспортировки
образцов на транспортных средах: на
0,9% растворе натрия хлорида — до 24 ч, на
0,1% пептонной воде — до 72 ч, на среде КС
— до 5—7 сут.
Ректальные
мазки транспортируются только на
транспортных средах: наилучшей является
агаризованная среда КС, на которой
кампилобактер сохраняет жизнеспособность
от одних суток (без охлаждения) и до
3 сут (с охлаждением).
Вирусологические
исследования при диарейных заболеваниях
Материалом
для выделения возбудителей вирусных
диарей служат фекалии больных, взятые
в первые дни заболевания. Для сбора
фекалий используют стерильные флаконы
с резиновой или пластмассовой пробкой.
Для этой цели удобны флаконы из-под
пенициллина. Фека
лии
собирают стерильной лопаточкой, заполняя
1/3—1/4 пенициллинового флакона,
резиновую пробку закрепляют лейкопластырем.
Пробы транспортируют в контейнерах,
заполненных сухим льдом или другим
хладагентом, при температуре не выше
0е
С. Время доставки не должно превышать
4—6 ч. При отсутствии хладагента материал
можно транспортировать в 50% забуференном
растворе глицерина (50% стерильного
химически чистого глицерина, 50% стерильного
изотонического раствора натрия хлорида,
pH 7,4) в течение 1-2 сут.
В
связи с тем, что ротавирусы, вирусы
группы Norwalk,
коронавирусы, калицивирусы и
астровирусы плохо репродуцируются в
культурах клеток, для их обнаружения
используют электронную и иммуноэ-
лектронную микроскопию. Выделение
энтеровирусов и аденовирусов осуществляется
на различных линиях первичных или
перевиваемых культур клеток в зависимости
от вида вируса. Диагностику ротавирусных
диарей проводят по выявлению ротавирусных
антигенов в фекалиях, используя
«тест-систему диагностическую
иммуноферментную для обнаружения
ротавирусных антигенов» отечественного
производства (предприятие «Аквапаст»,
Санкт-Петербург).
Для
выявления иммунологических сдвигов,
обусловленных вирусами-возбудителями
острых гастроэнтеритов, исследуют две
пробы крови — раннюю,
взятую в первые 2—3 дня болезни, и позднюю,
взятую спустя 2—3 недели от начала
заболевания. Можно исследовать и одну
пробу сыворотки, однако диагностическая
трактовка результатов при этом
затруднена. Для серологической диагностики
используют реакции: нейтрализации,
связывания комплемента, торможения
гемагглютинации, иммунолюминесценции,
радиоиммунологический и иммуноферментный
методы. На этиологическую роль вируса
указывает четырехкратное и большее
увеличение титра антител к нему.
Соседние файлы в папке новая папка
Способы взятия биоматериала для исследований методом пцр
1.2.1. Соскобы. Для
соскобов используются одноразовые
стерильные зонды, имеющие ватный тампон
с повышенной адсорбцией или «щеточки»,
реже — ложки Фолькмана, малые ушные ложки
или аналогичные инструменты со слегка
затупленными краями. Поскабливающими
движениями собрать материал. Исследуемый
материал должен содержать возможно
большее количество эпителиальных клеток
и минимальное количество слизи, примесей
крови и экссудата. Внести материал в
стерильную пробирку типа эппендорф с
буферным раствором (см. раздел 1.1.).
Соскоб
из цервикального канала: перед
взятием соскоба необходимо удалить
избыток слизи стерильным ватным тампоном,
обработать шейку матки стерильным
физиологическим раствором. Зонд ввести
в цервикальный канал на глубину 0,5-1,5
см, избегая соприкосновения со стенками
влагалища, и поскабливающим движением
(не до крови) собрать материал. Небольшое
количество эритроцитов в пробе не влияет
на результат анализа. При наличии эрозии
шейки матки материал берут с границы
здоровой и измененной ткани.
Соскоб
из уретры: зонд
ввести в уретру (у мужчин — на глубину
2-4 см) и несколькими вращательными
движениямисобрать
материал. Накануне перед взятием
материала допускается провокация
(острая пища, алкоголь и др.). Рекомендуется
воздержаться от мочеиспускания в течение
1-2-х часов перед взятием пробы. При
наличии обильных гнойных выделений
соскоб надо брать не позже, чем через
15 минут после мочеиспускания.
Соскоб
с конъюнктивы берут,
предварительно проведя анестезию глаза
0,5% раствором дикаина. Вывернув веко,
зондом с ватным тампоном (либо глазным
скальпелем) собрать эпителиальные
клетки с конъюнктивы.
Соскоб
из прямой кишки: зонд
ввести в анальное отверстие на глубину
3-4 см и вращательным движением собрать
материал.
1.2.2. Мазки. Одноразовым
стерильным зондом с ватным тампоном
или щеточкой взять небольшое количество
отделяемого (со сводов влагалища, из
зева, носоглотки и др.) и перенести в
стерильную пробирку типа эппендорф с
буферным раствором (см. раздел 1.1.).
1.2.3. Кровь. Для
исследований методом ПЦР кровь должна
быть нативной (не
свернувшейся).
Кровь
собрать асептически, путем венопункции
— в фирменную пробирку (2-3 мл) с
антикоагулянтом ЭДТА (гепарин
в качестве антикоагулянта использовать
нельзя!),
аккуратно перемешать, плавно переворачивая
пробирку.
Кровь
с ЭДТА является биоматериалом для
следующих групп исследований:
—
генетические исследования (момент
забора крови значения не имеет).
—
выявление возбудителей инфекций (наиболее
информативными являются пробы, взятые
при ознобе, повышенной температуре, т.
е. предположительно во время виремии
или бактериемии).
1.2.4. Моча. В
пустой стерильный контейнер с плотно
завинчивающейся крышкой собирают
утреннюю первую или среднюю порцию мочи
в количестве минимум 10 мл. Если забор
мочи проводят днем, то перед этим пациент
не должен мочиться 1,5-3 часа.
1.2.5. Мокрота. Утром
провести санацию ротовой полости и
горла (прополоскать раствором питьевой
соды). Собрать мокроту в пустой стерильный
широкогорлый флакон.
1.2.6. Биоптат. Взятие
материала осуществлять из зоны
предполагаемого местонахождения
возбудителя инфекции, из поврежденной
ткани или пограничного с повреждением
участка. Поместить биоптат в стерильную
пробирку типа эппендорф с буферным
раствором.
1.2.7. Слюна,
желудочный сок, ликвор, синовиальная
жидкость. Слюна
(1-5 мл), желудочный сок (1-5 мл), ликвор
(1-1,5 мл) — поместить в пустую стерильную
пробирку (контейнер).
1.2.8. Сок
предстательной железы. После
массажа предстательной железы сок
собирают в количестве 0,5-1 мл в пустую
стерильную пробирку (контейнер). При
невозможности получить сок, сразу после
массажа собирают первую порцию мочи в
количестве не более 10 мл (в этой порции
содержится сок предстательной железы).
1.2.9. Смывы,
бронхоальвеолярный лаваж (БАЛ). Стерильным
ватным тампоном и 5-7 мл физиологического
раствора проводят смыв, например, с
наконечника эндоскопа или бронхоскопа,
и помещают 0,5-5 мл смыва в пустую стерильную
пробирку (контейнер).
1.2.10. Фекалии. Зонд
с ватным тампоном помещают внутрь
каловых масс и слегка проворачивают,
захватывая небольшое количество
материала. Затем материал помещают в
стерильную пробирку типа эппендорф с
буферным раствором.
Общие рекомендации
1.1.1.
Взятие биоматериала производится из
предполагаемого места обитания
микроорганизмов и развития инфекции.
1.1.2.
Количество забранного материала должно
быть небольшим. Избыток отделяемого,
слизь и гной отрицательно влияют на
качество выделения ДНК и способствуют
деградации ДНК при хранении и
транспортировке.
1.1.3. При
внесении биоматериала, взятого у пациента
зондом с ватным тампоном или щеточкой,
в пробирку типа эппендорф с буферным раствором,
необходимо:
— прежде,
чем погружать собранный на тампоне
(щеточке) биоматериал в раствор, размазать
его по сухой стенке пробирки, затем
смочить тампон (щеточку) в растворе и,
вращая зонд, тщательно смыть весь
материал со стенки пробирки и тампона
(щеточки);
— по
возможности отжать тампон о стенку
пробирки, удалить зонд с тампоном
(щеточкой) и закрыть пробирку.
